PRÉSENTATION COMMENT LES ENZYMES SONT SÉLECTIONNÉES POUR LE CRIBLAGE RESSOURCES FAQ
Présentation

Accédez à des régions de séquence enzymatiques inexploitées pour permettre une exploration optimale

Nos nouvelles séquences enzymatiques ont été identifiées à partir de divers génomes unicellulaires microbiens non cultivés et ont été sélectionnées pour leurs propriétés intéressantes à l’aide de modèles assistés par apprentissage automatique en fonction de la prédiction de la structure, du clustering basé sur la structure et du filtrage - vous ne trouverez probablement ces séquences nulle part ailleurs.


Les transaminases (TA) sont des enzymes qui catalysent le transfert d’un groupe aminé d’un donneur d’amines à une cétone ou à un aldéhyde. Cette capacité à faciliter l’amination stéréosélective des cétones prochirales est précieuse dans la fabrication pharmaceutique, où la demande d’amines chirales comme éléments constitutifs d’ingrédients pharmaceutiques actifs (API) est élevée.


Nous avons identifié et réduit un sous-ensemble d’enzymes TA qui maintiennent leur activité dans une gamme de conditions extrêmes sur de nombreux substrats divers, utiles pour le processus de fabrication pharmaceutique.


Notre kit de criblage permet de sélectionner des séquences pertinentes sur le plan fonctionnel, qui pourront à l’avenir être combinées avec des ressources d’ingénierie enzymatique en aval afin de fournir une voie plus efficace pour l’ingénierie des protéines.

Comment les enzymes sont sélectionnées pour le criblage

La base de données bitBiome bit-GEM est la principale ressource de séquences génomiques de microbes consultables et hautement utilisables. Exploitant les ressources microbiennes les plus puissantes de la nature, notamment des échantillons provenant d’environnements tels que le sol, les sources thermales, l’eau de mer, les sites miniers et d’autres conditions extrêmes, la base de données bit-GEM contient un vaste éventail de séquences de gènes acquises par la plateforme de séquençage unicellulaire bitBiome. Cette méthode de séquençage assure une couverture plus profonde du génome, ce qui permet de découvrir la « matière noire » microbienne. Ces séquences ont peu de similitudes avec celles du domaine public, ce qui donne au client la liberté d’opérer dans ces régions de séquence.

Accédez à des régions de séquence enzymatiques inexploitées
Accédez à des régions de séquence enzymatiques inexploitées
Des milliers d’enzymes candidates présélectionnées pour leur activité
Une grande diversité de séquences pour répondre à des besoins spécifiques
Des séquences inédites, inconnues du domaine public, vous donnent une liberté d’action
Optimisez vos efforts d’ingénierie
Optimisez vos efforts d’ingénierie
Criblage de nouveaux variants de transaminases présélectionnés, nécessaires à l’identification des résultats positifs
Diverses spécificités de substrats, y compris des substrats encombrants difficiles à gérer 
Consulter les experts
Consulter les experts
 Ensemble, bitBiome + Twist fournissent toutes les ressources nécessaires pour générer, optimiser et tester de manière plus approfondie les banques de variants
Accès facile aux experts pour vous aider à développer vos futurs projets d’ingénierie enzymatique
Découvrez le criblage accéléré avec Twist + bitBiome

Criblage enzymatique 48 enzymes pour le criblage

Expédition le lendemain Expédition le lendemain

Possibilité de mise à l’échelle Possibilité de mise à l’échelle

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Nos nouvelles séquences enzymatiques ont été identifiées à partir de divers génomes unicellulaires microbiens non cultivés et ont été sélectionnées pour leurs propriétés intéressantes à l’aide de modèles assistés par apprentissage automatique en fonction de la prédiction de la structure, du clustering basé sur la structure et du filtrage - vous ne trouverez probablement ces séquences nulle part ailleurs.


Les transaminases (TA) sont des enzymes qui catalysent le transfert d’un groupe aminé d’un donneur d’amines à une cétone ou à un aldéhyde. Cette capacité à faciliter l’amination stéréosélective des cétones prochirales est précieuse dans la fabrication pharmaceutique, où la demande d’amines chirales comme éléments constitutifs d’ingrédients pharmaceutiques actifs (API) est élevée.


Nous avons identifié et réduit un sous-ensemble d’enzymes TA qui maintiennent leur activité dans une gamme de conditions extrêmes sur de nombreux substrats divers, utiles pour le processus de fabrication pharmaceutique.


Notre kit de criblage permet de sélectionner des séquences pertinentes sur le plan fonctionnel, qui pourront à l’avenir être combinées avec des ressources d’ingénierie enzymatique en aval afin de fournir une voie plus efficace pour l’ingénierie des protéines.

Comment les enzymes sont sélectionnées pour le criblage

La base de données bitBiome bit-GEM est la principale ressource de séquences génomiques de microbes consultables et hautement utilisables. Exploitant les ressources microbiennes les plus puissantes de la nature, notamment des échantillons provenant d’environnements tels que le sol, les sources thermales, l’eau de mer, les sites miniers et d’autres conditions extrêmes, la base de données bit-GEM contient un vaste éventail de séquences de gènes acquises par la plateforme de séquençage unicellulaire bitBiome. Cette méthode de séquençage assure une couverture plus profonde du génome, ce qui permet de découvrir la « matière noire » microbienne. Ces séquences ont peu de similitudes avec celles du domaine public, ce qui donne au client la liberté d’opérer dans ces régions de séquence.

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Une grande diversité de séquences pour répondre à des besoins spécifiques
Des séquences inédites, inconnues du domaine public, vous donnent une liberté d’action
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Criblage de nouveaux variants de transaminases présélectionnés, nécessaires à l’identification des résultats positifs
Diverses spécificités de substrats, y compris des substrats encombrants difficiles à gérer 
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Comment les enzymes sont sélectionnées pour le criblage

Comment les enzymes sont sélectionnées pour le criblage

S’appuyant sur les puissantes ressources microbiennes de la nature, notamment des échantillons provenant d’environnements tels que le sol, les sources thermales, l’eau de mer, les sites miniers et d’autres conditions extrêmes, la base de données bit-GEM contient un vaste éventail de séquences génétiques acquises par la plateforme de séquençage unicellulaire bitBiome. Cette méthode de séquençage assure une couverture plus profonde du génome, ce qui permet de découvrir la « matière noire » microbienne. Ces séquences ont peu de similitudes avec celles du domaine public, ce qui donne au client la liberté d’opérer dans ces régions de séquence. La sélection des 48 enzymes fournies dans ce kit s’est appuyée non seulement sur les capacités de synthèse d’ADN de Twist, mais aussi sur un effort bioinformatique collaboratif afin d’affiner les régions de séquence fonctionnelles.
 

Comment les enzymes ont été sélectionnées pour notre kit

Un total de 369 transaminases actives a été identifié avec 19 substrats. 273 des enzymes se sont révélées actives dans 10 % de DMSO, avec 30 actives à 60 °C. Enfin, les enzymes ont été testées pour leur sensibilité de pH et leur sélectivité.

Critères de criblage des transaminases

Critères de criblage des transaminases

 

Vous trouverez ci-dessous une répartition des enzymes testées contre divers substrats dans les différentes conditions décrites précédemment (divers % de DMSO, solvants organiques, températures et niveaux de pH).

Graphique du nombre d’enzymes

Découvrez le criblage accéléré avec Twist + bitBiome

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S’appuyant sur les puissantes ressources microbiennes de la nature, notamment des échantillons provenant d’environnements tels que le sol, les sources thermales, l’eau de mer, les sites miniers et d’autres conditions extrêmes, la base de données bit-GEM contient un vaste éventail de séquences génétiques acquises par la plateforme de séquençage unicellulaire bitBiome. Cette méthode de séquençage assure une couverture plus profonde du génome, ce qui permet de découvrir la « matière noire » microbienne. Ces séquences ont peu de similitudes avec celles du domaine public, ce qui donne au client la liberté d’opérer dans ces régions de séquence. La sélection des 48 enzymes fournies dans ce kit s’est appuyée non seulement sur les capacités de synthèse d’ADN de Twist, mais aussi sur un effort bioinformatique collaboratif afin d’affiner les régions de séquence fonctionnelles.
 

Comment les enzymes ont été sélectionnées pour notre kit

Un total de 369 transaminases actives a été identifié avec 19 substrats. 273 des enzymes se sont révélées actives dans 10 % de DMSO, avec 30 actives à 60 °C. Enfin, les enzymes ont été testées pour leur sensibilité de pH et leur sélectivité.

Critères de criblage des transaminases

Critères de criblage des transaminases

 

Vous trouverez ci-dessous une répartition des enzymes testées contre divers substrats dans les différentes conditions décrites précédemment (divers % de DMSO, solvants organiques, températures et niveaux de pH).

Graphique du nombre d’enzymes

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Ressources
FAQ

INFORMATIONS GÉNÉRALES

Quel est le niveau de pureté de vos enzymes ?
Quelle est la durée de conservation de vos enzymes ?
Qu’est-ce que la sélectivité des enzymes ?
Quels sont les paramètres typiques du fonctionnement des enzymes ?

PLANIFIER VOTRE EXPÉRIENCE DE CRIBLAGE

Que dois-je utiliser comme substrat de contrôle ?
Quelles sont les conditions de réaction typiques pour les enzymes évoluées ?
Quels tampons peut-on utiliser avec les enzymes ?
Quels solvants peuvent être utilisés avec les enzymes ?
Quelle est la tolérance au pH ?
Quelle est la tolérance à la température ?

DÉPANNAGE

Que dois-je faire si le substrat est très insoluble dans l’eau ?
Que dois-je faire en cas d’activité faible ou nulle ?
Que dois-je faire s’il y a trop de résultats et que les différences entre eux ne sont pas faciles à déterminer ?
Que dois-je faire si un résultat a été identifié et que la réaction doit être optimisée et mise à l’échelle ?
Que dois-je faire si un autre donneur d’amines est souhaité ?
Que dois-je faire si j’ai d’autres questions ?

QUESTIONS COURANTES SUR LE CRIBLAGE

J’ai préparé ma solution tampon/cofacteur la semaine dernière. Puis-je quand même l’utiliser ?
Que puis-je faire si la solubilité du substrat dans les milieux aqueux pose problème et que le mélange réactionnel est trouble ?
Faut-il ajouter les réactifs dans un certain ordre ?

OPTIMISATION

Comment optimiser au mieux les conditions de réaction (température, pH, co-solvant) ?

CONTRÔLE QUALITÉ

Comment assurez-vous l’activité de chaque enzyme du kit ?
Comment vérifiez-vous la quantité de poudre d’enzyme dans chaque kit ?
Comment s’assurer que la poudre de lysat est exempte d’hôtes d’expression vivants ?
Comment confirmez-vous la durée de conservation de chaque lot ?
Pourquoi est-il important de vérifier l’absence d’hôtes d’expression vivants ?
Qu’est-ce qu’une méthode colorimétrique et pourquoi est-elle utilisée ?
Que se passe-t-il si un lot ne répond pas aux normes de qualité ?
Comment garantissez-vous l’exactitude de vos processus de contrôle qualité ?
Les clients peuvent-ils demander des rapports de contrôle qualité pour leur lot spécifique de kit d’enzymes ?

INFORMATIONS GÉNÉRALES

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Qu’est-ce que la sélectivité des enzymes ?
Quels sont les paramètres typiques du fonctionnement des enzymes ?

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Que dois-je utiliser comme substrat de contrôle ?
Quelles sont les conditions de réaction typiques pour les enzymes évoluées ?
Quels tampons peut-on utiliser avec les enzymes ?
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Quelle est la tolérance au pH ?
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DÉPANNAGE

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Que dois-je faire en cas d’activité faible ou nulle ?
Que dois-je faire s’il y a trop de résultats et que les différences entre eux ne sont pas faciles à déterminer ?
Que dois-je faire si un résultat a été identifié et que la réaction doit être optimisée et mise à l’échelle ?
Que dois-je faire si un autre donneur d’amines est souhaité ?
Que dois-je faire si j’ai d’autres questions ?

QUESTIONS COURANTES SUR LE CRIBLAGE

J’ai préparé ma solution tampon/cofacteur la semaine dernière. Puis-je quand même l’utiliser ?
Que puis-je faire si la solubilité du substrat dans les milieux aqueux pose problème et que le mélange réactionnel est trouble ?
Faut-il ajouter les réactifs dans un certain ordre ?

OPTIMISATION

Comment optimiser au mieux les conditions de réaction (température, pH, co-solvant) ?

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Comment vérifiez-vous la quantité de poudre d’enzyme dans chaque kit ?
Comment s’assurer que la poudre de lysat est exempte d’hôtes d’expression vivants ?
Comment confirmez-vous la durée de conservation de chaque lot ?
Pourquoi est-il important de vérifier l’absence d’hôtes d’expression vivants ?
Qu’est-ce qu’une méthode colorimétrique et pourquoi est-elle utilisée ?
Que se passe-t-il si un lot ne répond pas aux normes de qualité ?
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Les clients peuvent-ils demander des rapports de contrôle qualité pour leur lot spécifique de kit d’enzymes ?
Explorez les régions de séquence de la transaminase
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